1. Diagnostic et santé publique
Contrôle de la qualité et de la salubrité des coquillages afin de permettre aux conchyliculteurs l'écoulement de leurs marchandises sur le marché tunisien avec une garantie d'absence de biotoxines ..Trois groupes de phycotoxines sont contrôlés . ; liposolubles. , paralysantes et amnésiantes
Méthode de référence d’analyse: Le dépistage sur souris des toxines liposolubles à partir des glandes digestives de coquillages sont effectués selon la méthode d’analyse dite de Yasumoto et al. 1984 modifiée, reconnue au plan international. Les coquillages sont considérés contaminés si on observe, sur une période de 24 heures, la mort d'au moins deux souris sur les trois inoculées avec des extraits de glandes digestives (ou de chair totale) des échantillons à tester. Ceci signe la présence, dans des proportions supérieures aux limites fixées, d’une ou de plusieurs toxines (acideokadaïque, dinophysistoxines, pecténotoxines, yessotoxines et azaspiracides).
La méthode de référence pour l’analyse des phycotoxines paralysantes est un bio-essai sur souris selon la méthode validée par l’AOAC (Association of Official Analytical Chemist) référencée 959-08 (AOAC, 1990).Les coquillages sont considérés impropres à la consommation lorsque l’échantillon analysé contient plus de 80 μg équivalent saxitoxine pour 100 g de chair totale
La méthode d’analyse des phycotoxines amnésiantes est une analyse chimique en chromatographie liquide haute performance couplée à une détection par UV. Un résultat est considéré comme positif lorsque l’échantillon contient plus de 20 μg d’acide domoïque/g de chair.
2. Brevet International Patent: ANTI-CANCER AND DISINTEGRIN SCORPION VENOMS. KR 20190102003 A Inventors: KHAMASSI, Oussema and KHARRAT, Riadh 2019
3. Activité de Recherche :
Biotoxines marines produites par des micro-organismes Le Laboratoire des Toxines alimentaires de l’Institut Pasteur de Tunis (IPT) étudie depuis quelques années l'impact potentiel des toxines phytoplanctoniques et fongiques d'origine marine au niveau des parcs conchylicoles de la lagune de Bizerte (Tunisie). Cette lagune a une production estimée à 2.000 tonnes d’huîtres et de moules par an, avec une importance économique considérable pour la région. De même, la France est un pays européen pour lequel la production conchylicole représente une force économique non négligeable et qui bénéficie d’un dispositif sanitaire performant mis en place depuis 1984 pour le suivi des contaminations par toxines phytoplanctoniques. Cependant, d’autres composés que ces phycotoxines peuvent être à l’origine de la toxicité des coquillages comme cela est régulièrement observé en France et en Tunisie. De plus, ces dernières années, les responsables de certains parcs de la lagune de Bizerte constatent une croissance plus faible et une mortalité plusimportante des coquillages. Les analyses effectuées sur des prélèvements de zones touchées ont prouvé, notamment, l’absence de phytoplancton toxique, de bactéries toxinogènes, de phycotoxines et de contaminants chimiques (métaux lourds, hydrocarbures …). Les résultats d’analyses révèlent que les épisodes de toxicité sont associés à la présence de champignons microscopiques marins (Fusarium sp. Aspergillus sp. et Trichoderma sp.). De plus, grâce à des méthodes de séparation chromatographique et de spectrométrie de masse, la présence de sphinganine-C17 (C17-SAMT, pour C17 Sphinganine Analogue MycoToxin), une mycotoxine. Notre projet de recherche a pour but de contribuer à l’évaluation du processus de contamination par la C17-SAMT, ainsi que de déterminer les propriétés structurales, pharmacologiques et toxicologiques de cette toxine. En particulier, des études visant à (i) tester sa bio-accumulation chez les animaux, (ii) étudier sa toxicité in vivo et in vitro et (iii) son mode d’action sont nécessaires. Dans ce contexte, nous proposons :
- D’identifier le(s) micro-organisme(s) producteur(s) de la C17-SAMT
- D’étudier les caractéristiques environnementales associées à la production de toxine
- D’étudier son transfert aux coquillages
- De purifier et de caractériser physicochimiquement la toxine et d’autres isoformes
- D’évaluer ses propriétés toxicologiques et pharmacologiques à l’aide d’études in vitro et in vivo
concernant en particulier:
o Caractérisation des effets toxiques in vivo et in vitro
o Investigation du potentiel génotoxique Implication du métabolisme humain
o Identification des cibles moléculaires et détermination du mécanisme d’action sur le système neuromusculaire.
Composition du service
Chef de service :
| Prénom, Nom | Position/ Fonction |
| Riadh Marrouchi | Biologiste |
| Faten Dziri | Surveillante du laboratoire |
| Mohamed Kamel Ferchichi | Technicien |
